Sigatoka negra es causada por el hongo Mycosphaerella fijiensis Morelet en su fase sexual, este patógeno es el causante de las mayores pérdidas en la producción de banano. En este trabajo de investigación se evaluó en laboratorio el efecto de extractos vegetales sobre el crecimiento in vitro de M. fijiensis por lo que se recolectaron hojas de banano con síntomas de sigatoka negra en estadío seis de la enfermedad, después se incubó el tejido colectado y se realizó la descarga del patógeno en placas Petri con agar agua mezclado con los extractos de Etanol y Acetato de etilo de los cítricos: CIT 01, CIT 02, CIT 03, CIT 04, CIT 05 y CIT 06 pertenecientes a la colección localizada en la Universidad EARTH, a concentraciones de 250 mg/L (C1) y 500 mg/L (C2) con un testigo comercial (propiconazol) a una concentración de 10 mg/L y un testigo absoluto. Se evaluó el porcentaje de germinación de ascosporas y el crecimiento de tubos germinativos en los que los extractos de etanol de los tratamientos CIT02 (C1), CIT03 (C1), CIT01 (C2), CIT02 (C2) y CIT03 (C2) lograron reducir significativamente el crecimiento de los tubos germinativos al ser comparados con el testigo absoluto, pero en ninguno de los tratamientos de etanol se logró inhibir el 50 % del crecimiento del tubo germinativo de M. fijiensis. En el caso de los extractos elaborados con acetato de etilo no se presentaron diferencias estadísticamente significativas entre tratamientos, logrando inhibir en un 75 % el crecimiento de los tubos germinativos de las ascosporas. En todos los tratamientos el porcentaje de germinación de ascosporas fue de un 100 %.

Black sigatoka disease is caused by a fungus Mycosphaerella fijiensis Morelet in its sexual phase. This pathogen is the cause of the biggest losses in the production of bananas. In this research work, the effect of plant extracts in vitro growth of M. Fijiensis was evaluated in the laboratory, so banana leaves were collected with symptoms of black sigatoka in the sixth stage of the disease, then the collected tissue was incubated and the pathogen was discharged in Petri dishes with water agar mixed with ethanol extracts and ethyl acetate from citrus: CIT 01, CIT 02, CIT 03, CIT 04, CIT 05 and CIT 06 belonging to the collection located at Earth University, in concentrations of 250 mg/L (C1) and 500 mg/L (C2) with a commercial control (propiconazole) at a concentration of 10 mg/L and an absolute witness. The percentage of germination of ascospores and the growth of germinative tubes were evaluated in which the ethanol extracts of the treatments CIT02 (C1), CIT03 (C1), CIT01 (C2), CIT02 (C2) and CIT03 (C2) managed to significantly reduce the growth of the germinative tubes when compared to the absolute witness, but none of the ethanol treatments were able to inhibit 50% of the growth of the germination tube of M. fijiensis. In the case of extracts made with ethyl acetate, there were no statistically significant differences between treatments, achieving to inhibit in 75 % the growth of the germinative tubes of the ascospores. In all treatments the germination percentage of ascospores was 100 %.